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弗元(上海)生物科技有限公司
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脐带间充质干细胞培养、传代、冻存、复苏的方法
人阅读 发布时间:2023-12-05 11:05
原代细胞培养(酶消化法):
- 该部分以单细胞悬液为操作起始。使用胰酶、胶原酶、分散酶等酶消化法(推荐使用组织细胞消化液RC200104)从人脐带华通氏胶组织获得。
- 原代接种:以上获得的细胞沉淀,漩涡震荡使其分散为单个细胞,加入适量的完全培养基,充分混匀。200 g离心5-10分钟。弃去上清,漩涡震荡使沉淀分散为单个细胞,加入适量的完全培养基,充分混匀。按照一定的细胞密度接种与培养器皿中。37℃、5%CO2、饱和湿度静置培养48小时。该时间段内请勿移动培养器皿,也无需观察。48小时后观察细胞,根据情况选择半量或全量更换新鲜完全培养基。
- 换液培养:后每48小时更换新鲜培养基。观察细胞,弃去原培养上清。若悬浮细胞较多,则可用DPBS轻轻洗涤细胞1-2次。添加新鲜完全培养基继续培养。
- 传代:原代细胞传代以克隆大小和克隆中心细胞密度为标准。若克隆中心细胞密度较大,则不论整个培养器皿是否长满均应进行传代操作。弃去培养上清,加入适量的DPBS,轻轻晃动后弃去DPBS,重复洗涤2-3次。加入适量的0.25%胰蛋白酶消化液(推荐使用间充质干细胞消化液,RC200108)室温消化2分钟,加入5倍体积的完全培养基终止消化。用移液管、吸管或移液枪头等轻轻吹打细胞,使细胞从培养皿表面脱落。
- 冻存:参照下述“hUMSC细胞冻存”。
- 原代细胞培养(组织块法):
- 该部分以组织块作为起始。组织块为脐带华通氏胶切成1-3 mm3大小的组织块。
- 原代接种:用缓冲液清洗过的组织块,用适量的完全培养基悬浮,300目无菌滤网过滤或200 g离心5-10分钟,收集组织块。用适量的完全培养基重新悬浮组织块,均匀接种于培养器皿中,37℃、5%CO2、饱和湿度静置培养。48小时内最好不要对培养器皿进行任何移动。
- 换液:48小时后进行半量或全量更换新鲜完全培养基,具体视情况而定。每2天更换新鲜培养液。组织块周围有密度较高的细胞时,可以选择去除组织块。
- 传代:参照上述“传代”方法。
- 冻存:参照下述“hUMSC细胞冻存”。
- hUMSC细胞传代培养(非原代):
- 在显微镜下观察细胞,当细胞融合度达到90%,即可传代。
- 弃去培养上清,加入DPBS溶液清洗1次,加入细胞消化液(推荐使用间充质干细胞消化液,RC200108)使其完全覆盖培养器皿底部。
- 室温孵育1-2分钟,轻轻拍打培养器皿,显微镜下观察大部分细胞从培养器皿底部脱落后立即停止消化。
- 加入消化液2倍体积的人间充质干细胞完全培养基,用移液器轻轻吹打培养器皿表面未完全脱离的细胞,使细胞完全脱落并均匀分散。
- 将细胞悬液转移到离心管中,200 g离心5分钟。
- 弃上清,加入完全培养基,重悬细胞,计数。1:3-1:6比例传代,均匀铺在培养器皿中,置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养。
- hUMSC细胞复苏:
- 从液氮中取出冻存的hUMSC细胞,迅速将冻存管/冻存袋放入复苏装置或37℃水浴快速融化。
- 将解冻后的细胞悬液缓慢加入适量完全培养基(冻存体积与培养基的体积比为1:5-1:10)。
- 200 g离心5分钟,弃去上清,加入适量的完全培养基重悬细胞。
- 将细胞均匀铺到培养器皿中,摇动培养器皿使细胞均匀分布,37℃、5%CO2、饱和湿度培养,24小时后观察细胞状态。
- 24小时后更换新鲜完全培养基继续培养,以后每2天更换新鲜完全培养基。
- hUMSC细胞冻存
- 细胞达到90%汇合度,弃去原有培养基,DPBS清洗1次。
- 加入细胞消化液(推荐使用间充质干细胞消化液,RC200108)使其完全覆盖培养器皿底部,室温孵育1-2分钟,轻轻拍动培养器皿,显微镜下观察大部分细胞从培养器皿底部脱落后立即停止消化。
- 加入消化液2倍体积的人间充质干细胞完全培养基,用移液器轻轻吹打培养器皿地面未完全脱离的细胞,使细胞完全脱落并均匀分散。
- 将细胞悬液转移到离心管中,200 g离心5分钟,弃去上清。
- 加入适量细胞冻存液(推荐使用细胞冻存液Ⅱ,RC200106),调整细胞冻存密度在1×106 cells/cm2左右,每支冻存管分装0.5-1 ml,使用冻存袋冻存请自行根据需要选择冻存方案。
- 程序降温仪冻存,或放入冻存盒然后置于-80℃或直接放入-80℃,24小时后转入液氮中长期保存。
细胞形态展示:
分化能力鉴定: